NADH 氧化酶(NOX)測試盒 生化試劑
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NADH 氧化酶(NOX)測試盒,廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細(xì)胞中,可在氧氣存在下,直接將NADH 氧化為NAD。
NADH 氧化酶(NOX)測試盒
(貨號:A116-1-1 分光光度法)
一、測定意義:
NOX(EC 1.6.99.3)廣泛存在于動物、植物、微生
物和培養(yǎng)細(xì)胞中,可在氧氣存在下,直接將NADH 氧化
為NAD。該酶不僅參與NAD 的再生,而且與免疫反應(yīng)
密切相關(guān)。
二、測定原理:
NADH 氧化酶(NADH oxidase,NOX)能夠?qū)?/span>
NADH氧化為NAD,NADH 的氧化與2,6 二氯酚靛藍(lán)
(DCPIP)的還原相偶聯(lián),藍(lán)色的DCPIP 被還原為無色
的DCPIP,在600nm下測定藍(lán)色DCPIP的還原速率計算出
NADH 氧化酶活性的大小。
三、需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液
器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰、蒸餾水
四、試劑的組成和配制( 50T/48 樣):
試劑一:液體50mL×1 瓶,-20℃保存。
試劑二:液體10mL×1 瓶,-20℃保存。
試劑三:液體1mL×1 瓶,-20℃保存。
試劑四:液體50mL×1 瓶,4℃保存。
試劑五:液體6 mL×1 瓶,4℃保存。
試劑六:粉劑×2 瓶,-20℃保存;臨用前每瓶加入 5mL
蒸餾水,用不完的試劑分裝后-20℃保存, 禁
止反復(fù)凍融。
五、樣本的前處理:
組織、細(xì)菌或細(xì)胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離:
①、準(zhǔn)確稱取0.1g 組織或收集500萬細(xì)胞,加入1mL試
劑一和10μL試劑三,用冰浴勻漿器或研缽勻漿。
②、將勻漿600g,4℃離心5min。
③、棄沉淀,將上清液移至另一離心管中,11000g,4℃
離心10min。
④、上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白,可用于測定從
線粒體泄漏的NOX(此步可選做)。
⑤、步驟④中的沉淀即為線粒體,加入200μL 試劑二和
2μL試劑三,超聲波破碎(冰浴,功率20%或200W,
超聲3s,間隔10 秒,重復(fù)30 次),用于NOX 活
性測定。血清(漿)樣品:直接檢測。
六、測定步驟:
1、 分光光度計預(yù)熱30min 以上,調(diào)節(jié)波長至600nm,蒸
餾水調(diào)零。
2、 樣本測定:
(1)試劑四、試劑五和試劑六于37℃(哺乳動物)或
25℃(其它物種)孵育5min。
(2)在1mL比色皿中加入40μL樣本、700μL試劑四、
100μL試劑五和160μL試劑六,混勻,記錄600nm 處20s
時吸光值A1和1min20s 后的吸光值A2,計算ΔA=A1-A2。
七、NOX 活力單位的計算
1、血清(漿)NOX 活力的計算:
單位定義:每mL血清(漿)在每mL反應(yīng)體系中每分
鐘A600變化0.01定義為一個酶活力單位。
NOX(U/mL)=ΔA×V反總÷V樣÷0.01÷T=2500×ΔA
2、組織、細(xì)菌或細(xì)胞中NOX 活力的計算:
(1)按樣本蛋白濃度計算:此法需要自行測定樣本
蛋白質(zhì)濃度。
單位定義:每mg組織蛋白在每mL反應(yīng)體系中每分鐘
A600變化0.01定義為一個酶活力單位。
NOX(U/mg prot)=ΔA×V反總÷(V樣×Cpr)
÷0.01÷T=2500×ΔA÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算:
單位定義:每g 組織在每mL 反應(yīng)體系中每分鐘A600
變化0.01 定義為一個酶活力單位。
NOX(U/g 鮮重)=ΔA×V反總÷(W× V樣÷V樣
總)÷0.01÷T=505×ΔA÷W
(3)按細(xì)菌或細(xì)胞密度計算:
單位定義:每1 萬個細(xì)菌或細(xì)胞在每mL 反應(yīng)體系
中每分鐘A600 變化0.01 定義為一個酶
活力單位。
NOX(U/104 cell)=ΔA×V反總÷(500×V樣÷V樣總)÷0.01÷T=1.01×ΔA
V反總:反應(yīng)體系總體積,1mL;
V樣:加入樣本體積,0.04mL;
V樣總:加入提取液體積,0.202 mL;
T:反應(yīng)時間,1 min;
Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;
W:樣本質(zhì)量;
500:細(xì)胞或細(xì)菌總數(shù),500萬。
NADH 氧化酶(NOX)測試盒